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猴头菇多糖提取工艺研究_梁华

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22卷第120061Vol.22,No.1Jan.,2006
猴头菇多糖提取工艺研究
Investigationoftheextractiontechnologyofpolysaccharide
fromhericiumerinaceus

1
1
LIANGHua

李雪林
2
2
LIXue-lin

陆亚春
3
3
LUYa-chun
(1.河南科技大学食品与生物工程学院,河南洛阳471003;2.河南科技大学农学,河南洛阳471003;
3.桂林工学院材料与化学工程系,广西桂林541004
(1.CollegeofFood&Bioengineering,HenanUniversityofScienceandTechnology,Luoyang,Henan471003,China;
2.AgriculturalCollege,HenanUniversityofScienceandTechnology,Luoyang,Henan471003,China;
3.DepartmentofMaterialandChemicalEngineering,GuilinInstituteofTechnology,Guilin,Guangxi541004,China
摘要:对猴头菇中可溶性粗多糖的提取工艺进行了研究,
过单因素试验和正交试验L9(34,研究了料液比乙醇浓度时间对多糖提取率的影响结果显:醇浓度和料液比是影响多糖提取率的主要因,佳工艺为料液1:20,乙醇浓度为95%,浸提时间4h,在最佳提取工艺时,猴头菇的多糖提取率为7.29%
关键词:猴头菇;提取;多糖
Abstract:ExtractiontechnologyofpolysaccharidefromHericiumerina-ceuswasinvestigated.Singlefactorandorthogonalexperimentwereap-pliedtoanalyzetheeffectsofthefactorssuchassolid-liquidratio,dens-ityofetherandtimeontheextractionpercentofthepolysaccharides.Ex-perimentalresultsindicatedthatdensityofetherandsolid-liquidratiosignificantlyaffecttheextractionpercentofthesolublepolysaccharides.Theoptimumsolid-liquidratiois1:25,densityofetheris95%andtheextractiontime4h.Inthiscondition,theextractionpercentofsolublepo-lysaccharidesinhericiumerinaceusis7.29%.
Keywords:Hericiumerinaceus;Extraction;Polysaccharide
疑难病症的治疗方面已显示出很好的疗效[4]
近年来,对多糖提工艺的研方法多如水浸法、稀碱液浸提法、稀酸液浸提法[5]。但因为稀酸、碱条件,易使多糖发生糖苷键的断裂,部分多糖发生水解而使多糖的提取率减少,故本实验采用热水浸提法[6]
1材料与方法
1.1料和试剂
干猴头菇子实体;
胰蛋白酶:(酶活:2500U/g,中国医药集团上海化学试剂公司;
碘液、糖化酶:(酶活:10U/g,京奥博星生物技术责任有限公司;
乙醇、蒽酮、硫酸、葡萄糖:均为分析纯1.2验仪器
TU-1800S紫外可见分光光度计:北京普析通用仪器公;
TGL-16C高速台式离心机:上海安亭科学仪器厂;SHB-Ⅲ循环水式多用真空泵:江苏金坛宏凯仪器厂;HH-4数显恒温水浴槽:江苏亿通电子有限公司;BS-210S电子天平:德国赛多利斯天平公司;RE-52AA转蒸发仪:上海亚荣生化仪器厂;
DZF6050型真空干燥箱:上海精宏实验设备有限公司。1.3艺流程
粉碎热水浸提(95e抽滤醇析离心去淀粉除蛋白去小分子物离心干燥
多糖广泛存在于植物、物和微生物组织,它具有合成高分子所没有的特殊生物活,是生命有机体的重要组成部分,并且具有多种多样的生物学功能[1]
猴头菇(Hericiumerinaceus提取的多糖是链由B-1,3糖苷键,支链为B-1,6糖苷键连接的葡聚糖混合物[2]猴头菇作为一种药用菌,对消化系统的癌变、溃疡、胃窦炎、慢性胃炎等病均有疗,并且能提高人体的免疫能力[3]。药用真菌多糖作为一类重要的生物活性物,在对一些人类
作者简介:梁华(1977-,,河南科技大学食品与生物工程学院教。E-mai:llh@mai.lhaust.edu.cn收稿日期:2005-11-05
35

果蔬深加工2006年第1
2.2.1实验材料的制备将无杂质的猴头菇子实体60e下真空干燥4h以除去水分。将干燥的猴头菇子实体磨碎并30筛。将所得粉末密封保存待用。2.2.2实验步骤
(1称取6.25g猴头菇倒入圆底烧瓶中,加入表1中对应的蒸馏水的倍数摇匀,于恒温水浴锅内,1对应的时间浸提。浸提后将混合物进行抽滤,将滤液放入旋转蒸发仪中蒸馏浓缩至20mL左右[9]。浓缩液转入小锥形瓶,加入表1中对应浓度的乙醇(20倍于浓缩液进行醇析24h使其完全沉淀。再将混合物3500r/min转速离心得多糖粗品。
(2多糖粗品转入小烧杯并加蒸馏水20mL使其溶,90e下水浴30min将多糖糊化,温至60e,糖化酶(酶活:10U/g0.005g处理10min,碘液检验至碘液不变色[10]
(3称取0.00125g胰蛋白酶(酶活:2500U/g37e下处理50min,280nm下紫外检测无明显吸收峰,说明蛋白质已经除尽[11]
(4把透析袋放入大烧杯中煮沸10min,待其完全分离后捞出待用。将处理液装入已用线绑好一端的透析袋,然后在离液面2~3cm处绑好另一端并进行流动透析[12]。透析24h,直至透析袋中的溶液从淡黄色变为无色。
2实验方法
2.1标准曲线的绘制
称取0.5g葡萄糖分析纯,用蒸馏水定容于500mL容量瓶中;再称取0.4g蒽酮,用浓硫酸定容于200mL容量瓶中;分别量取1.0,2.0,3.0,4.0,5.0,6.0mL葡萄糖溶液形成浓度梯度,各定容于100mL容量瓶中;各取2mL葡萄糖溶液,加入8mL蒽酮硫酸容至10mL,再取2mL馏水,8mL蒽酮硫酸容至10mL;7样品于冰中冷5min,浸入沸水中加热10min,冷却至室温[7];用紫外分光光度620nm,0.0342,0.0912,0.1336,0.1844,0.2471,0.3157,0.3618描绘标准曲线见图1
1葡萄糖标准曲线
2.2单因素实验
根据文献得知,影响多糖提取效果的因素有:浸提温度,浸提时间,加水倍数,析的乙醇浓[8]在文献中发现浸提温度都是在80~100e间讨,考虑到实际生的成,故只对其3因素进行论。因提的多具有,100e,95e作为浸提温度。本实验对浸提时间,加水倍,醇析的乙醇浓度做单因素实,单因素实验的安排见表1
1单因素实验
试验号12345678910
A浸提次数1111111111
B加水倍数2020202051015202020
C浸提时间/h2468222222
D乙醇浓度/%100100100100100100100708090
(5在透析后的多糖溶液中加入40mL水乙醇放置24h沉淀。将沉淀后的混合物离,淀转入小烧杯中(录烧杯的重,40e真空干燥[13]。完全干燥后再次称重,前后的质量差即为提取的粗多糖的质量。
(6粗多糖的测量采用蒽酮硫酸法,参照文献进行[14]
3结果与讨论
3.1水倍数对提取率的影响
加水倍数改变头菇提取响见22结果显示,5体积到15倍体积水的过程中,糖提取率有明显的提高。从15倍体积到20倍体积水的过程,多糖提取率的提高虽没有面的明显,但是也有大提高。由于水不是昂贵的原料,因此可以把加水倍数的最优条件定为20倍体积水。实验数据见表2
2加水倍数对多糖提取率的影响
3.2提时间对提取率的影响
浸提时间改变头菇提取响见3
36

22卷第1
华等:猴头菇多糖提取工艺研究
3.4交实验结果与统计分析

3结果显示,浸提时间从2h6h,提取率有明显的提高;6h后提取率变化很微小,所以浸提时间的最优条件6h实验数据见表3
2加水倍数对多糖提取率的影响
实验号
1234
加水倍数
5101520
粗品重量/g0.04120.04820.05120.0543
吸光度0.2070.1950.1980.197
提取率/%2.072.242.432.55
根据单因素实验的结果,3个因素中最优条件分别为:6h,加水20,90%浓度的乙醇。选定三因素三水平做正交实验,因素水平、实验结果计算及分析见表56。从表6可知,浸提次数是影响多糖提取率的最关键因素,其次是乙醇浓度,加水倍数,在实验范围内,浸提时间的影响最小。
4乙醇浓度对多糖提取率的影响
实验号
1234
乙醇浓度/%
708090100
粗品重量/g0.05080.05230.05410.0543
吸光度0.1940.1960.1960.197
提取率/%2.342.442.532.55
5正交试验L9(34因素水平表
水平123
A浸提次数123
B加水倍数152025
C浸提时间/h
468
D乙醇浓度/%
859095
3浸提时间对多糖提取率的影响3浸提时间对多糖提取率的影响
实验号
1234
浸提时间/h
2468
粗品重量/g0.05430.05960.06490.0658
吸光度0.1970.2030.2080.207
提取率/%2.552.923.283.31
试验号
123456789T1T2T3T1平均T2平均T3平均R
A浸提次数1112223338.3313.0519.162.7774.3506.3873.610
6正交实验结果表
B加水倍数12312312311.814.7314.013.9334.9104.6700.977
C浸提时间12323131213.612.9214.294.5334.3074.6730.366
D乙醇浓度12331223113.2312.3914.924.4104.1304.9730.843
多糖得/%2.142.613.584.054.834.175.617.296.26
3.3乙醇浓度对提取率的影响
乙醇浓度改变头菇提取响见44结果显示,度从70%~90%取率都有明显的增,90%以后曲线趋势变得平,说明90%乙醇浓度已经能够把多糖完全沉淀下,再高浓度的乙醇已经没有必要。本实验采取的是加入时乙醇的浓度,而实际醇析的乙醇浓度65%~95%之间,实验数据见表4
极差的大小反应各个素对指标影响程度,根据7中的极差分析,排列出实验因素的主次顺序如下:A>D>B>C。由表7最优水平搭配为A3B2C1D3,即最优提取条件为:浸提3,20积水,提时4h,醇浓95%。通过正交实验发现浸提次数是影响多糖提取率的最
4乙醇浓度对多糖提取率的影响
主要因,1次、2次、3次的提取实验中发现多糖提取率
37

果蔬深加工
明显增加,至于再增浸提数是否还显著地提提取,本次实验没有进一步研究。这主要是出于实际生产的考,超过3次的浸提虽然能增加提取率,是可能会花费更多的时间成本,因此认为把浸提次数定为3次是比较符合实际生产的。加水倍数是次之的影响因素,加水过多会耗费能,加水过少会使猴头菇中的多糖提取不充分,因此20体积水最合适。其次是乙醇浓,过多乙醇浓度偏高会造成浪费,乙醇浓度偏低会使多糖沉淀不完,响提取率,因此乙醇浓度为95%为最优条件。
7正交实验方差分析表
因素ABCD误差
自由度
22226
平方和19.6551.5540.2051.1072.87
均方9.8280.7770.1030.5540.478
F20.5741.6270.2151.159
显著性
1342
2006年第1
参考文献
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5各因素水平对提取率的影响
另外,柯丽霞等[16]的研究结果表,在用稀碱(NaOH作为提取剂提取红汁乳菇多糖时根本就得不到多糖;在用稀(NH4Cl作提取剂时最后能得到粗多糖粉末,但得率很低(0.3NH4Cl得率为3.42%,蒸馏水得率为4.35%,同时,酸和稀碱提取多糖容易造成糖苷键的断提取具有方法简便、提取率高等优点。
[17,18]
。本实验利
用蒸馏水的最优提取得率可以达7.29%。故利用蒸馏水
(上接第21K2HPO40.01%MgSO4#7H2O;起始pH7;最适发酵温度为28e;量为20mL;3%龄为12h的种子培养液。
(2通过对微生物代谢生长曲线的研究,得知B菌株在24h左右酶活性最高,达到23.3U/mL
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