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增强免疫力功能评价方法及修订说明-

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增强免疫力功能评价方法及修订说明
附件1: 增强免疫力功能评价方法(征求意见稿 保健食品评价试验项目、试验原则及结果判定
Items, Principles and Result Assessment
1 试验项目 11 动物实验 111 体重

112脏器/体重比值测定:胸腺/体重比值,脾脏/体重比值
113细胞免疫功能测定:小鼠脾淋巴细胞转化实验,迟发型变态反应实验 114体液免疫功能测定:抗体生成细胞检测,血清溶血素测定
115单核—巨噬细胞功能测定:小鼠碳廓清实验,小鼠腹腔巨噬细胞吞噬荧光微球实验
116 NK细胞活性测定
2 试验原则
21 所列的指标均为必做项目
22分为正常动物实验方案与免疫功能低下模型动物实验两种方案, 可任选其一进行实验、
23采用免疫功能低下动物模型实验方案时需做外周血白细胞总数测定 3 结果判定
31采用正常动物实验,受试样品具有增强免疫力作用。
在细胞免疫功能、体液免疫功能、单核-巨噬细胞功能及NK细胞活性四个方面测定中,任两个方面试验结果为阳性,可以判定该受试样品具有增强免疫力作用。
其中细胞免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,判定细胞免疫功能试验结果阳性。体液免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,判定体液免疫功能试验结果阳性。单核—巨噬细胞功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,判定单核—巨噬细胞功能试验结果阳性。NK细胞活性测定实验的一个以上剂量结果阳性,判定NK细胞活性结果阳性。
正常动物实验需进行四个方面的测定。 32 采用免疫功能低下动物实验,受试样品对免疫功能低下者具有增强免疫力作用。
在免疫功能低下模型成立条件下,血液白细胞总数、细胞免疫功能、体液免疫功能、单核-巨噬细胞功能及NK细胞活性五个方面测定中,任两个方面试验结果为阳性,判定该受试样品对免疫功能低下者具有增强免疫力作用。
其中细胞免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,或任一个实验的两个剂量组结果阳性,可判定细胞免疫功能试验结果阳性。体液免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,或任一个实验的两个剂量组结果阳性,可判定体液免疫功能试验结果阳性。单核—巨噬细胞功能测定项目中两个实验的结果均为阳,或任一个实验的两个剂量组结果阳性,可判定单核—巨噬细胞功能试验结果阳性。NK细胞活性测定实验的一个以上剂量结果阳性,可以判定NK细胞活性结果阳性。血液白细胞总数测定的二个以上剂量结果阳性,可以判定血液白细胞总数结果阳性。

增强免疫力功能评价方法及修订说明
免疫功能低下模型动物实验至少需进行三个方面的测定。同时在各项实验中,任何一项测试都不出现加重免疫抑制剂作用的结果。
增强免疫力功能评价方法及修订说明
增强免疫力功能检验方法
Method for the Assessment of Enhancing Immune Function 1. 原理:
免疫系统主要包括中央与外周淋巴器官、淋巴组织与全身各处的淋巴细胞、抗原呈递细胞等,还包括血液中的白细胞。淋巴细胞经血液与淋巴使各处的淋巴器官与淋巴组织连成一个功能整体。胸腺属中央淋巴器官,主要功能就是确保T淋巴细胞的产生与成熟。外周淋巴器官包括血液、淋巴管与免疫活性细;脾脏对抗原发生免疫应答作用,脾窦的巨噬细胞具有清除功能,脾白髓含有记B细胞,产生对T依赖抗原的体液免疫应答。淋巴细胞就是特异性免疫应答的主要细胞群,按其表面标志物,分为T细胞、B细胞与天然杀伤细胞(NK三大类,T胞又分为CD4+(Th细胞与CD8+T淋巴细胞。B淋巴细胞转化为浆细胞后能合成与释放抗原特异抗体,所有抗体都就是免疫球蛋白,但并非所有的免疫球蛋白分子都具有抗体功能。免疫系统可产生特异性免疫与非特异性免疫功能,检测上述免疫系统的各种代表性指标的改变可对增强免疫力作用的功能做出相应判定。 2 实验动物选择
推荐用近交系小鼠,C57BL/6JBALB/C,68周龄,1822g(BALB/C种可16-18g,单一性别,雌雄均可,每组1015只。 3 剂量分组及受试样品给予时间
实验设三个剂量组与1个阴性对照组。以人体推荐量的10倍为其中一个剂,另设二个剂量组。必要时设阳性对照组。选做免疫低下模型法时,应设模型对照组。受试样品给予时间四周或30天。 4.免疫功能低下动物模型
可选用环磷酰胺、氢化可的松或其她合适的免疫抑制剂进行药物造模。 41 造模原理: 411环磷酰胺主要通过DNA烷基化破坏DNA的合成而非特异性地杀伤淋巴细,并可抑制淋巴细胞转化;环磷酰胺对B细胞的抑制比T细胞强,一般对体液免疫有很强的抑制作用,NK细胞的抑制作用较弱。

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412氢化可的松主要通过与相应受体结合成复合物后进入细胞核,阻碍NF-κB进入细胞核,抑制细胞因子与炎症介质的合成与释放,达到免疫抑制目的。氢化可的松还可损伤浆细胞,抑制巨噬细胞对抗原的吞噬、处理、与呈递作用,所以氢化可的松对细胞免疫、体液免疫与巨噬细胞的吞噬、NK作用都有一定的抑制作用。 42 免疫抑制剂剂量选择
环磷酰胺可选择40mgkg,腹腔注射,连续两天,末次注射给药后第5天测定各项指标;氢化可的松可选择40mgkg,肌内注射,隔天一次,5,末次注射给药后次日测定各项指标。
各指标对两种模型敏感性不同,环磷酰胺模型比较适合抗体生成细胞检测、血清溶血素测定、白细胞总数测定;氢化可的松模型比较适合迟发型变态反应、碳廓清实验、腹腔巨噬细胞吞噬荧光微球实验、NK细胞活性测定,建议根据不同的免疫功能指标选择合适的模型。 43 受试物给予
连续给予受试物4周或30,在第3周后开始给予免疫抑制剂,进行模型与预防性给药相结合的实验。 5 实验方法
51血液白细胞数测定 小鼠外周血白细胞总数与淋巴细胞数检测方法(仪器法
全血用EDTA·K2抗凝后经血细胞分析仪检测,可测定白细胞数量,并可对白细胞进行分分类计数。 511仪器与材料
乙二胺四乙酸二钾(EDTA·K2·2H2O,MW40447,离心管,全血细胞分析仪上样管,眼科镊子,振荡器,加样枪,冷冻离心机,全血细胞分析仪。 512实验步骤 5121试剂配制
血液抗凝:EDTA·K2能与血液中的钙离子结合成为螯合物,从而阻止血液凝,1522mgEDTA·K2可阻止1ml血液凝固。
抗凝剂配制:称量8mg EDTA·K2加纯净水至100ml制成抗凝剂,50μl抗凝剂
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可抗凝1ml小鼠全血。 5122采血 以摘除小鼠眼球的方法采集全血,采用干净无菌的眼科镊子摘取小鼠一侧或双侧眼球,让血液自由滴入装有抗凝剂的15ml离心管(或商品化的抗凝管,采血过程中不断混匀血液与抗凝剂防止血液凝固,每只动物采集抗凝全血约1ml
5123检测分析 上机前血液颠倒混匀,注意检查就是否存在凝块。在24h内以全血细胞分析仪检测白细胞总数与淋巴细胞数。上机操作参照仪器说明书。 513数据分析
一般采用方差分析,按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,计算F,p005,结论:各组均数间差异无显著性意义;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐性要求后,用转换后的数据进行统;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
受试样品组的白细胞总数显著高于阴性对照组,可判定该项实验结果阳性。 52 ConA 诱导的小鼠脾淋巴细胞转化实验 可任选下列方法之一 521 MTT 5211 原理
T淋巴细胞受ConA刺激后发生母细胞增殖反应,活细胞特别就是增殖细胞通过线粒体水解酶将 MTT(一种淡黄色的唑氮盐分解为兰紫色结晶而显色,其光密度值能反映细胞的增殖情况。 5212 仪器与材料
RPMI1640 细胞培养液、小牛血清、2-巯基乙醇(2-ME、青霉素、链霉素、刀豆蛋白A(ConA、盐酸、异丙醇、MTTHank's液、PBS缓冲液(pH72-74 纱布、200目筛网、24孔培养板,96孔培养板(平底,手术器械、大号注射器内芯、二氧化碳培养箱、酶标仪、分光光度计、超净工作台、高压灭菌器、无菌滤器。

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5213 实验步骤 52131 试剂配制
完全培养液 RPMI1640培养液过滤除菌,用前加入10%小牛血清, 1%谷氨酰胺(200mmol/L,青霉素(100U/mL,链霉素(100ug/L5×105mol/L2-基乙醇,用无菌的1mol/LHCl1mol/LNaOHpH70-72,即完全培养液。
ConA 用双蒸水配制成100ug/mL的溶液,过滤除菌,在低温冰箱(-20保存。
无菌Hank's 用前以35%的无菌NaHCO3pH72-74 MTT 5mgMTT溶于1mL pH72PBS,现配现用。
酸性异丙醇溶液 96mL 异丙醇中加入4mL 1mol/LHCl,临用前配制。 52132 脾细胞悬液制备
无菌取脾,置于盛有适量(3-5ml无菌Hank's液平皿中,并在脾上面放置一块纱布,用大号注射器内芯轻轻将脾磨碎,制成单个细胞悬液。200目筛网过滤,Hank's液洗2,每次离心10min(1000r/min。然后将细胞悬浮于2mL的完全培养液中,用全自动细胞计数仪计数脾细胞,或用台酚兰染色计数活细胞数(95%以上,调整细胞浓度为3×106/mL 52133 淋巴细胞增殖反应
将细胞悬液分两孔加入24孔培养板中,每孔1mL,一孔加75μl ConA (相当75μg/mL,另一孔作为对照,5CO2,37CO2孵箱中培养72h培养结束前4h,每孔轻轻吸去上清液07mL,加入07mL不含小牛血清的RPMI1640培养液,同时加入MTT(5mg/mL50μl /,继续培养4h。培养结束后,每孔加入1mL酸性异丙醇,超声震荡(2或人工吹打混匀,使紫色结晶完全溶解。然后分装到96培养板中,每个孔分装3孔作为平行样,用酶联免疫检测仪,570nm波长测定光密度值。也可将溶解液直接移入2mL比色杯中,分光光度计上在波长570nm测定OD值。
5214 数据处理及结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个
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实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
用加ConA孔的光密度值减去不加ConA孔的光密度值代表淋巴细胞的增殖能,受试样品组的光密度差值显著高于对照组的光密度差值,可判定该项实验结果阳性。
5215 注意事项
ConA的浓度很重要,浓度过低不能刺激足够的细胞增殖,浓度过高会抑制细胞增殖,不同批号的ConA在实验前要预试,以找到最佳浓度。 522 XTT 5221原理
由于MTT经还原所产生的甲臜产物不溶于水,且溶解甲臜的有机溶剂有毒,可选择XTT法替代MTT法。其原理就是:XTT就是二甲氧唑黄,在电子耦合试剂存在的情况下,活细胞线粒体中的脱氢酶可将黄色的XTT还原成水溶性的橘黄色的甲,生成的甲能够溶解在组织培养基中,不形成颗粒,可直接用酶联免疫检测仪检测定吸光值。 5222实验步骤
脾细胞悬液制备同MTT; 淋巴细胞增殖反应:调整细胞浓度为5×107,取细胞悬液100μl分别加入96孔培养板中,一孔加510μl ConA ,另一孔作为对照,2个平行孔,375CO2饱与湿度孵箱中培养72h。培养结束前4h,向各孔中加入2050μlXTT作液(按试剂盒说明现用现配,孵育4小时。用酶标仪在450nm波长处检测每孔的光密度。
5223 数据处理及结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。

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用加ConA孔的光密度值减去不加ConA孔的光密度值代表淋巴细胞的增殖能,受试样品组的光密度差值显著高于对照组的光密度差值,可判定该项实验结果阳性。
5224 注意事项
细胞浓度及培养时间在实验前要预试,以找到最佳效果。 523 溴脱氧尿嘧啶核苷标记酶联免疫吸附测定法(BrdU-ELISA 5231 原理
T淋巴细胞在有丝分裂原ConA等的刺激下产生增殖反应,BrdU可竞争掺入到增殖细胞中新合成的DNA链内,BrdU标记的细胞作为抗原结合到固相载体表面,加入酶连接的抗-BrdU抗体,使BrdU抗原与酶标抗体充分结合,抗原抗体复合物与底物作用后产生有色物质,其光密度可反映细胞增殖的程度。 5232 仪器与材料
低温离心机,全自动酶标仪、超净工作台、二氧化碳培养箱、96孔培养板(、倒置显微镜、移液器、手术器械、200目筛网、细胞活性分析仪;RPMI1640 细胞培养液、小牛血清、青霉素、链霉素、刀豆蛋白A(ConAHank's液、PBS缓冲液(pH72-74BrdU细胞增殖检测试剂盒(ELISA、纯净水、终止液。 5233 实验步骤 52331 试剂配制
完全培养液 RPMI1640培养液过滤除菌,用前加入10%小牛血清,1%谷氨酰胺(200mmol/L,青霉素(100U/mL,链霉素(100μg/L5×105mol/L2-基乙醇,用无菌的1mol/LHCl1mol/LNaOHpH70-72,即完全培养液。
ConA 用双蒸水配制成100ug/mL的溶液,过滤除菌,在低温冰箱(-20存。
无菌Hank's 用前以35%的无菌NaHCO3pH72-74
BrdU标记液 将标记剂(试剂盒No11:100的比例加到培养液中混匀,现配现用。
抗体贮存液(母液 Anti-BrdU-POD(试剂盒No3中加11ml双蒸水充分混合,存于-20℃备用。

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抗体工作液 100μl抗体母液加10ml抗体稀释液(试剂盒No4,现配现用。 洗液 10ml清洗缓冲液(试剂盒No5100ml双蒸水。 52332 脾细胞悬液制备
无菌取脾,置于盛有适量无菌Hank's液平皿中,并在脾上面放置一块纱布,大号注射器内芯轻轻将脾磨碎,制成单个细胞悬液。200目筛网过滤,Hank's液洗2,每次离心10min(1000r/min然后将细胞悬浮于2mL的完全培养液中,用全自动细胞计数仪计数脾细胞,或用台酚兰染色计数活细胞数(应在95%以上,调整细胞浓度为2×107/mL 52333 淋巴细胞培养
将细胞加入96孔培养板中,10μl/,每份细胞加2,1孔再加入90μl1640培养液,2孔加入85μl1640培养液与53μl ConA,同时设3个空白孔,每孔仅100μl 1640培养液,5%CO237℃培养箱孵育72h,培养结束前4 h加入BrdU标记液,10μl /,培养结束后离心(1000r/min,10min,弃上清,吹干细胞,4冰箱保存待测。
52334 酶联免疫吸附测定
每孔加200μl固定液,常温放置30min,吸弃固定液。加入100μl BrdU体工作液,37℃孵育60min;吸弃未结合的抗体,250μl洗液洗3,轻拍移去洗液。加底物溶液(TMB100μl /,常温孵育15min。用酶标仪测量吸光值,不加终止液时,测定发射波长为370nm(记为A370,参考波长492nm(记为A492;加终止液,测定发射波长为450nm(记为A450,参考波长690nm(记为A690 5234 数据处理及结果判定
计算每孔标记指数(LI,LI= (A370- A450空白370- (A492- A空白492LI= (A450- A- (A690- A空白690。用加ConA孔的LI值减去不加 ConA孔的LI值所得的差值代表淋巴细胞的增殖程度。
采用方差分析对标记指数差值进行统计学分析,按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,计算F,F< F005,则各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验
增强免疫力功能评价方法及修订说明
进行统计。
受试样品组的LI值差值显著高于对照组的LI值差值,可判定该项实验结果阳性。
5235 注意事项
选择有丝分裂原时ConA的浓度很重要,ConA的浓度过高会产生抑制作用,同批号的ConA在实验前要预试,以找到最佳刺激分裂浓度。 53 迟发型变态反应(DTH 迟发型变态反应就是细胞免疫的体内检测法,当致敏T细胞再次与抗原接触,引起T细胞活化,释放出多种细胞因子,致局部组织发生以单核细胞为主的炎症反应,一般在2448h达高峰。可任选下列方法之一试验。 531 二硝基氟苯诱导小鼠DTH(耳肿胀法 5311 原理
二硝基氟苯(DNFB稀释液可与腹壁皮肤蛋白结合成完全抗原,由此刺激 T 淋巴细胞增殖成致敏淋巴细胞。47d 后再将其涂抹于耳部进行抗原攻击,使局部肿胀,一般在抗原攻击后2448h达高峰,其肿胀程度可以反映迟发型变态反应程度。 5312 材料
DNFB、丙酮、麻油、硫化钡、打孔器。 5313 实验步骤 53131 试剂配制 DNFB溶液 DNFB溶液应新鲜配制,称取DNFB50mg,置清洁干燥小瓶中,将预先配好的5mL丙酮麻油溶液(丙酮:麻油=1:1,倒入小瓶,盖好瓶塞并用胶布密封。混匀后,250μl注射器通过瓶盖取用。
53132 致敏 每鼠腹部皮肤用硫化钡脱毛,范围约 3cm×3cm DNFB 50μl均匀涂抹致敏。
53133 DTH的产生与测定 5天后, DNFB 溶液 10μl均匀涂抹于小鼠右耳(两面进行攻击。攻击后 24h 颈椎脱臼处死小鼠,剪下左右耳壳。用打孔器取下直径8mm的耳片,称重。 5314 数据处理与结果判定

增强免疫力功能评价方法及修订说明
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
用左右耳重量之差表示DTH的程度。受试样品组的重量差值显著高于与对照组的重量差值,可判定该项实验结果阳性。 5315 注意事项: 操作时应避免DNFB与皮肤接触。
532 绵羊红细胞(SRBC诱导小鼠DTH(足跖增厚法 5321 原理
SRBC可刺激T淋巴细胞增殖成致敏淋巴细胞,4天后,当再以SRBC攻击时,攻击部位出现肿胀,其肿胀程度可反映迟发型变态反应程度。 5322 仪器与材料
游标卡尺(精密度002mmSRBC、微量注射器(50μl、足趾容积测量仪。 5323 实验步骤
53231 致敏 小鼠用2(v/vSRBC腹腔或静脉免疫,每只鼠注射02mL(1×108SRBC
53232 DTH的产生与测定 免疫后4,测量左后足跖部厚度或肿胀度,然后在测量部位皮下注射20(v/vSRBC,每只鼠20μl (1×108SRBC,注射后于24h测量左后足跖部厚度或肿胀度,同一部位测量三次,取平均值。
测量方法:用游标卡尺测量肉眼读数。或用足趾容积测量仪进行测量足跖部肿胀度,操作方法按仪器操作指引进行。 5324 数据处理与结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。

增强免疫力功能评价方法及修订说明
以攻击前后足跖厚度或肿胀度的差值来表示DTH 的程度。受试样品组的差值显著高于对照组的差值,可判定该项实验结果阳性。 5325 注意事项
前后两次测量足跖厚度时,最好由专人来进行。卡尺紧贴足跖部,但不要加压,否则会影响测量结果。
攻击时所用的SRBC要新鲜(保存期不超过1 54 抗体生成细胞检测(改良法 541 原理
溶血空斑试验就是检测产生IgMIgG等抗体分泌细胞数体外试验法。用绵羊红细胞(SRBC免疫的小鼠脾细胞悬液与一定量的SRBC混合,在补体参与下,使抗体分泌细胞周围的SRBC溶解,形成肉眼可见的空斑。 542 仪器与材料 溶血空斑自动图象分析仪、二氧化碳培养箱、恒温水浴、离心机、手术器械、200目筛网、SRBC、补体(豚鼠血清Hank's液、RPMI1640培养液、SA缓冲液(C4H4N2O3 046g, MgCl2 01g, CaCl22H2O 02g, NaCl 838g, NaHCO3 0252g and C8H11N2NaO3 03g, 加蒸馏水至1000mL、灭菌生理盐水、琼脂糖。 543 实验步骤: 5431 SRBC 绵羊颈静脉取血,将羊血放入有玻璃珠的灭菌锥形瓶中,一个方向摇动,以脱纤维,生理盐水2500rpm/min,15min,洗涤3,制备压积SRBC,放入4℃冰箱保存备用。
5432 完全培养基的制备:新生小牛血清经绵羊红细胞(v/v,5:1,4,30-60min,加入不完全培养基RPMI 1640,制备成含20%小牛血清的完全培养基。
5433 补体制备 股动脉取血,静置30-60min,2500rpm/min,15min分离血清,5-10只豚鼠血清混合后,与压积SRBC5:1(v/v比例混合,4℃冰箱放30-60min,间或震荡,2500rpm/min,15min分离血清,分装,-80℃冰箱保存。用时以完全培养基1:10(v/v比例稀释。
5434 免疫动物 压积SRBC以生理盐水制成2%(v/v的细胞悬液(1×108SRBC,每只鼠腹腔注射02mL

增强免疫力功能评价方法及修订说明
5435 脾细胞悬液制备 SRBC免疫4-5天后的小鼠颈椎脱臼处死,菌取脾脏,并在脾上面放置一块纱布,用大号注射器内芯轻轻将脾磨碎,制成单个细胞悬液,200目筛网过滤,1000rpm/min,10min,去上清,Hank’液洗2,以完全培养基RPMI 1640制备成5×1061×107个细胞/mL的脾细胞悬液。 5436 空斑的测定
54361 底层培养基制备 05g琼脂糖加入100mL灭菌生理盐水中,加热溶解,待温度于50℃左右时,1mL/孔的量加至六孔培养板中,琼脂凝固后备用。 54362 顶层培养基制备 05g琼脂糖加入100mL Hanks液中(PH72-74,加热溶解,05mL/试管的量加至46-50℃恒温的试管中。
54363 铺板: 50μl 20%SRBC(生理盐水配制,v/v200μl 脾细胞悬液先后加入含有05mL顶层的试管中,迅速混匀,倒入六孔板中并铺平顶层混合液,每个样本做两个平行孔。
54364 空斑测定:已制备好培养板放入37℃、5% CO2培养箱中孵育1h,然后每孔加入500μl以完全培养基稀释的补体(v/v,1:10,继续孵育2h,自动图象分析仪读取溶血空斑图象分析软件计数溶血空斑数。取平行孔空斑数的平均值为样本的溶血空斑数值,以空斑数/106脾细胞表示。 544 数据处理及结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
用空斑数/106脾细胞或空斑数/全脾细胞来表示,受试样品组的空斑数显著高于对照组的空斑数,可判定该项实验结果阳性。 55 血清溶血素的测定 可任选下列方法之一。 551 血凝法 5511 原理
SRBC免疫动物后,产生抗SRBC抗体(溶血素,利用其凝集SRBC的程度来
增强免疫力功能评价方法及修订说明
检测溶血素的水平。 5512 仪器与材料
SRBC、生理盐水、微量血凝实验板、离心机 5513 实验步骤
55131 SRBC 绵羊颈静脉取血,将羊血放入有玻璃珠的灭菌锥形瓶中,朝一个方向摇动,以脱纤维,放入4℃冰箱保存备用,可保存2周。
55132 免疫动物及血清分离 取羊血,用生理盐水洗涤3,每次离心(2000r/min10min。将压积SRBC用生理盐水配成2(v/v的细胞悬液,每只鼠腹腔注射02ml进行免疫。45d,摘除眼球取血于离心管内,放置约1h,将凝固血与管壁剥离,使血清充分析出,2000r/min离心10min,收集血清。
55133 凝集反应 用生理盐水将血清倍比稀释,将不同稀释度的血清分别置于微量血凝实验板内,每孔100μl,再加入100μl 05(v/vSRBC悬液,混匀,装入湿润的平盘内加盖,37℃温箱孵育3h,观察血球凝集程度。 5514 数据处理及结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
血清凝集程度一般分为5(0-Ⅳ记录,按下式计算抗体积数,受试样品组的抗体积数显著高于对照组的抗体水平,可判定该项实验结果阳性。
抗体水平=(S1+2S2+3S3……nSn
式中123……n代表对倍稀释的指数,S代表凝集程度的级别,抗体积数越,表示血清抗体越高。
0 红细胞全部下沉,集中在孔底部形成致密的圆点状,四周液体清皙。 Ⅰ级 红细胞大部分沉集在孔底成园点状,四周有少量凝集的红细胞。 Ⅱ级 凝集的红细胞在孔底形成薄层,中心可以明显见到一个疏松的红点。 Ⅲ级 凝集的红细胞均匀地铺散在孔底成一薄层,中心隐约可见一个小红点。 Ⅳ级 凝集的红细胞均匀地铺散在孔底成一薄层,凝块有时成卷折状。

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5515 注意事项
血清稀释时要充分混匀。最后一个稀释度应不出现凝集现象。 552 半数溶血值(HC50的测定 5521 原理
SRBC免疫动物后,产生抗SRBC抗体(溶血素,在补体参与下,SRBC一起孵育,可发生溶血反应,释放血红蛋白,通过测定血红蛋白含量反映动物血清中溶血素的含量。
5522 仪器与材料
分光光度计、全自动酶标仪、恒温培养箱、96孔培养板、离心机、恒温水浴、SRBC、补体(豚鼠血清SA缓冲液(C4H4N2O3 046g, MgCl2 01g, CaCl22H2O 02g, NaCl 838g, NaHCO3 0252g and C8H11N2NaO3 03g, 加蒸馏水至1000mL、都氏试剂(碳酸氢钠10g、高铁氰化钾02g、氰化钾005g,加蒸馏水至1000mL 5523 实验步骤
55231 SRBC 绵羊颈静脉取血,将羊血放入有玻璃珠的灭菌锥形瓶中朝一个方向摇动,以脱纤维,放入4℃冰箱保存备用,可保存2周。
55232 制备补体 采集豚鼠血,分离出血清(至少5只豚鼠的混合血清,1mL压积SRBC加入到5mL豚鼠血清中,4℃冰箱30min,经常振荡,离心取上,分装,70℃保存。用时以SA缓冲液按18稀释。
55233 免疫动物及血清分离 取羊血,用生理盐水洗涤3,每次离心(2000r/min10min。将压积SRBC用生理盐水配成2(v/v的细胞悬液,每只鼠腹腔注射02mL进行免疫。45d,摘除眼球取血于离心管内,放置约1h,使血清充分析出,2000r/min离心10min,6000r/min,4min,收集血清。 55234 溶血反应测定 552341检测方法1(分光光度计测定: 取血清用SA缓冲液稀释(一般为200500将稀释后的血清1mL置试管,依次加入10(v/vSRBC 05mL,补体1mL(SA液按1:8稀释另设不加血清的对照管(SA液代替。置37℃恒温水浴中保温1530min,冰浴终止反应。2000r/min离心10min。取上清液1mL,加都氏试剂3mL,同时取10
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(v/vSRBC 025mL加都氏试剂至4mL,充分混匀,放置10min,540nm处以对照管作空白,分别测定各管光密度值。
552342检测方法2(全自动酶标仪测定: 设样品孔与空白对照孔,样品孔:取血清10μl,1mL 1:5稀释的SA缓冲液稀;每孔加入稀释后的血清100μl;空白对照孔:每孔加入100μl 1:5稀释的SA缓冲,再依次加入10(v/vSRBC 50μl,补体100μl(SA溶液或PBS溶液按1:8,37℃恒温水浴中保温30min,1500r/min离心10min然后样品孔与空白对照孔各取上清液50μl加入另一个96孔培养板内, 加都氏试剂150μl 同时设半数溶血孔, 加入10(v/vSRBC 125μl,再加都氏试剂至200μl。用震荡器充分混匀,放置10min,540nm处用全自动酶标仪测定各孔光密度值。 5524 数据处理及结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
溶血素的量以半数溶血值(HC50表示,按下列公式计算:
样品光密度值
样品HC50=─────────────────×稀释倍数 SRBC半数溶血时的光密度值
样品光密度值-空白光密度值
或样品HC50=─────────────────────×稀释倍数 SRBC半数溶血时的光密度值-空白光密度值
受试样品组的HC50显著高于对照组的HC50,可判定该项实验结果阳性。 56 小鼠碳廓清实验 561 原理
在一定范围内,碳颗粒的清除速率与其剂量呈指函数关系。
以血碳浓度对数值为纵座标,时间为横座标,两者呈直线关系。此直线斜率(K
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表示吞噬速率。动物肝、脾重量影响吞噬速率,一般以校正吞噬指数a表示。 562 仪器与试剂
分光光度计、全自动酶标仪、计时器、血色素吸管、印度墨汁、Na2CO3 563 实验步骤 5631 溶液配制
注射用墨汁 将印度墨汁原液用生理盐水稀释34倍。 Na2CO3溶液 01gNa2CO3,加蒸馏水至100mL
5632 注射墨汁 称体重,从小鼠尾静脉注入稀释的印度墨汁,按每10g01mL计算。待墨汁注入,立即计时。 5633 测定
注入墨汁后210min,分别从内眦静脉丛取血20μl ,并立即将其加到 2mL 01%Na2CO3溶液中。用分光光度计或全自动酶标仪在600nm波长处测光密度值(OD,Na2CO3溶液作空白对照。
将小鼠处死,取肝脏与脾脏,用滤纸吸干脏器表面血污,称重。 以吞噬指数表示小鼠碳廓清的能力。按下式计算吞噬指数a:
lgOD1-lgOD2 K=─────── t2t1 体重 3
吞噬指数a ─────── × 肝重+脾重
K 564 数据处理及结果判定
一般采用方差分析,但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
受试样品组的吞噬指数显著高于对照组的吞噬指数,可判定该项实验结果阳性。
565 注意事项

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静脉注入碳粒的量、取血时间、取血量一定要准确。 墨汁放置中,碳粒可沉于瓶底,临用前应摇匀。
使用新的墨汁时,应在实验前摸索一个最适墨汁注入量,即正常小鼠在2030min内不易廓清。
57 小鼠腹腔巨噬细胞吞噬荧光微球试验方法
571原理:激活的巨噬细胞具有吞噬表面带有阳性可调理基团的荧光微球,含有巨噬细胞的腹腔液与调理过的荧光微球孵育一定时间后,去除多余未被吞噬的微球,收集以巨噬细胞为主的标本,用流式细胞仪检测巨噬细胞,计数吞噬荧光微球的巨噬细胞,计算吞噬百分率与吞噬指数,据此判定巨噬细胞的吞噬能力。 572仪器与材料
Hank's,小牛血清,PBS缓冲液,生理盐水,荧光微球(2m, 1%小牛血清白蛋白(BSA
流式细胞仪,超声清洗仪,二氧化碳细胞培养箱,离心机,6孔培养板,细胞刮,过滤器(75m,流式上样管,流式细胞仪专用鞘液,移液枪及吸头,白细胞计数板,手术器械一套,注射器,滴管,胶头吸管。 573 实验步骤 5731试剂配制
57311 5%小牛血清的Hank's:10ml小牛血清加入200ml Hank's液中,混匀,临用前配。 57312 PBS缓冲液的配制方法:KH2PO4 666g,Na2HPO4·12H2O 638g,将上述试剂溶于1000ml蒸馏水中调PH值至72即成。
57313 2%绵羊红细胞悬液的配制方法:实验前取绵羊颈静脉血,置于盛有玻璃珠(20个左右的三角瓶内,连续顺一个方向充分摇动510分钟,除去纤维蛋白,用生理盐水洗涤3,每次1500rPm,离心10分钟,4℃冰箱保存。实验前弃去上清,按血球压积用生理盐水配制成2%的红细胞悬液。
57314 1BSA的配制:05gBSA溶于50mlPBS缓冲液中,临用前配较好。
57315 荧光微球预调理:100μl荧光微球与10ml 1BSA 37℃避光孵30min, 超声处理5min,临用前配。

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5732 腹腔巨噬细胞吞噬荧光微球过程
实验前4天给每只小鼠腹腔注射02ml 2%绵羊血红细胞激活小鼠巨噬细胞,实验当天用颈椎脱臼法处死小鼠,腹腔注射加小牛血清的Hank's3ml/,轻轻按揉腹部20,以充分洗出腹腔巨噬细胞,然后将腹壁剪开一个小口,吸取腹腔洗液2ml75m过滤器过滤至试管内,调整巨噬细胞数为46×105/ml。用移液枪吸取1ml腹腔洗液于6孔培养板中,加入已经预调理过的荧光微球(1×107/,37℃二氧化碳细胞培养箱(或室温避光孵育90120分钟,孵育结束后弃上(含未贴壁细胞与多余荧光微球,每次使用10mlPBS缓冲液轻轻洗涤2,去上清后再加入4PBS缓冲液03ml,用细胞刮刮下贴壁细胞,轻轻吹打均匀后75m过滤器过滤后上机分析。 5733 流式细胞仪检测分析
57331 设门:首先设立FSC-SSC二维散点图,通过调节FSCSSC电压,以巨噬细胞设门界定分析的巨噬细胞群,最大限度地排除其它有核细胞、细胞碎片等的干扰; 57332 获取:在荧光微球发射光的荧光通路检测巨噬细胞的荧光强度,每份样本获取5000个巨噬细胞,数据可显示于二维散点图与直方图中。在二维散点图中可通过设门圈定未吞噬荧光微球的巨噬细胞群与吞噬荧光微球的巨噬细胞群;在直方图中可通过标尺标定未吞噬荧光微球的巨噬细胞群与吞噬荧光微球的巨噬细胞群,全部数据经相关软件分析未吞噬荧光微球的巨噬细胞与吞噬不同数量荧光微球的巨噬细胞的比例。

吞噬一个荧光微球 吞噬二个荧光微球
1 吞噬荧光微球后的小鼠腹腔巨噬细胞图(荧光显示400

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R2R3R4R5R6R1
2 吞噬荧光微球后的小鼠腹腔巨噬细胞FSC-SSCFL2-SSC二维散点图 R1: 总巨噬细胞群

Region% GatedY MeanR2: 未吞噬荧光微球的巨噬细胞群

R1100.00289.75R3: 吞噬一个荧光微球的巨噬细胞群 R265.70261.77R4: 吞噬两个光微球的巨噬细胞群 R319.39319.14R48.84363.63R5: 吞噬三个荧光微球的巨噬细胞群
R54.10410.94R6: 吞噬四个或四个以上荧光微球的巨噬细胞群 R61.12441.94
Marker% GatedMedianAll100.002.33M165.651.70M219.56691.58M38.911240.94M44.051700.08M51.052287.57M1M2M3M4M5
3 吞噬荧光微球后的小鼠腹腔巨噬细FL2直方图
574 数据处理及结果判定
吞噬荧光微球的巨噬细胞数
吞噬百分率(% = ─────────────── ×100 计数的巨噬细胞数
被吞噬的荧光微球总数

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吞噬指数= ───────────── 计数的巨噬细胞数
以吞噬百分率或吞噬指数表示小鼠巨噬细胞的吞噬能力。吞噬百分率需进行
-1p,式中P为吞噬百分率,用小数表示,然后再进行方差分析,数据转换,XSin 在进行方差分析时,需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,计算F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,p005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
受试样品组的吞噬百分率、吞噬指数与对照组吞噬百分率、吞噬指数比较,差异均有显著性,可判定该项实验结果阳性。 575 注意事项
5751 颈椎脱臼处死小鼠勿用力过大,防止腹腔内血管破裂出血,导致腹腔洗液中混杂大量红细胞,影响流式细胞仪的结果分析。
5752 孵育、细胞洗涤与上机全程注意避光,以保持微球荧光稳定性。 5753 巨噬细胞、荧光微球浓度要根据试剂说明书调整合适,否则影响结果准确性。
5754 细胞处理过程要轻柔,尽量减少碎片与杂质对结果分析的影响。 5755 腹水细胞上机前一定要用足够标准的滤器过滤,调理后多余的荧光微球要尽量去除,以防止流式细胞仪堵塞。 58 NK细胞活性测定
NK细胞就是没有TB细胞表面标志的淋巴细胞,具有非特异性杀伤作用。可任选下列方法之一测定。 581 乳酸脱氢酶(LDH测定法 5811 原理
正常情况下,活细胞的胞浆内含有的LDH不能透过细胞膜,当细胞受到NK胞的杀伤后,LDH释放到细胞外。LDH 可使乳酸锂脱氢,进而使NAD还原成NADH,后者再经递氢体吩嗪二甲酯硫酸盐(PMS还原碘硝基氯化四氮唑(INT,INT 接受H被还原成紫红色甲月 类化合物。在酶标仪上用490nm比色测定。

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5812 仪器与材料
酶标仪、全自动细胞计数仪、YAC-1细胞、Hank's(pH7274RPMI1640完全培养液、乳酸锂或乳酸钠、硝基氯化四氮唑(INT吩嗪二甲酯硫酸盐(PMSNAD02mol/LTris-HCl缓冲液(pH821NP4025%Triton 5813 实验步骤
58131 LDH基质液的配制 乳酸锂 5×10-2mol/L 硝基氯化四氮唑(INT 66×10-4mol/L 吩嗪二甲酯硫酸盐(PMS 28×10-4mol/L 氧化型辅酶Ⅰ(NAD 13×10-3mol/L 将上述试剂溶于02mol/LTris-HCl缓冲液中(pH82 58132 靶细胞的传代(YAC-1细胞
实验前24h将靶细胞进行传代培养。应用前以Hank's液洗3,RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为4×105/mL 58133 脾细胞悬液的制备(效应细胞
无菌取脾,置于盛有适量无菌Hank's液的小平皿中,并在脾上面放置一块纱,用大号注射器内芯轻轻将脾磨碎,制成单个细胞悬液。经200目筛网过滤,Hank's液洗2,每次离心10min(1000r/min。弃上清将细胞浆弹起,加入05mL灭菌水20,裂解红细胞后再加入05mL2Hank’s液及8mLHank’s,1000rpm,10min离心,然后将细胞悬浮于2mL的完全培养液中,用全自动细胞计数仪计数脾细胞;或用1mL10%小牛血清的RPMI1640完全培养液重悬,1%冰醋酸稀释后计数(活细胞数应在95%以上,用台酚兰染色计数活细胞数(应在95%以上,最后用RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为2×107/mL 58134 NK细胞活性检测
取靶细胞与效应细胞各100μl(效靶比50:1,加入U96孔培养板中;靶细胞自然释放孔加靶细胞与培养液各100μl,靶细胞最大释放孔加靶细胞与1NP4025%Triton100μl ;上述各项均设三个复孔,37℃、5CO2培养箱中培4h,然后将96孔培养板以1500r/min离心5min,每孔吸取上清100μl置平底96孔培养板中,同时加入LDH基质液100μl,反应3min,每孔加入1mol/LHCl 30μl,
增强免疫力功能评价方法及修订说明
在酶标仪490nm处测定光密度值(OD
按下式计算NK细胞活性: 反应孔OD-自然释放孔OD NK细胞活性%= ────────────────── × 100% 最大释放孔OD-自然释放孔OD 5814 数据处理及结果判定
NK细胞活性需进行数据转换,XSin-1p,式中PNK细胞活性,用小数表,然后再进行方差分析,在进行方差分析时,需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,计算F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
受试样品组的NK细胞活性显著高于对照组的NK细胞活性,即可判定该项实验结果阳性。 5815 注意事项
靶细胞与效应细胞必须新鲜,细胞存活率应大于95 比色时环境温度应保持恒定 LDH基质液应临用前配制
在一定范围内,NK细胞活性与效靶比值成正比。一般效靶比值不应超过100 582 同位素3H-TdR测定法 5821 原理
将用同位素3H-TdR标记的靶细胞与淋巴细胞共同培养时,靶细胞可被NK胞杀伤。同位素便从被杀伤的靶细胞中释放出来,其释放的量与NK细胞活性成正比。通过测定靶细胞3H-TdR的释放率即可反应NK细胞的活性。 5822 仪器与材料
液体闪烁仪、多头细胞取集器、二氧化碳培养箱、3H-TdRRPMI1640 完全培养液、Hank's(pH7274YAC-1细胞、Triton X-100 5823 实验步骤

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58231 靶细胞的标记
取传代后24h生长良好的YAC-1细胞(存活率>951×106/mL YAC-1胞悬液加3H-TdR 10uCi进行标记,37℃、5CO2培养箱中培养2h,30min1次。标记后的细胞用培养液洗涤3,重悬于培养液中,使细胞浓度为1×105/mL
58232 脾细胞悬液的制备(效应细胞
无菌取脾,置于盛有适量无菌Hank's液的小平皿中,用镊子轻轻将脾撕碎,200,Hank's3,10min(1000r/min。然后将细胞悬浮于2ml 的完全培养液中,用台酚兰染色计数活细胞数(应在95%以上,最后用RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为1×107/mL
58233 NK细胞活性测定
96孔培养板中每孔加100μl标记的靶细胞,实验孔加100μl效应细胞,白对照孔加100μl培养液,最大释放孔加100μl 25% Triton X-100。每个样品3个复孔,5%CO237℃培养箱内温育4h,用多头细胞收集器将细胞收集在玻璃纤维滤纸上,用液体闪烁仪进行测量。 按下式计算NK细胞活性:
实验孔cpm NK细胞活性%=(1 ────────────────── ×100% 空白对照孔cpm 最大释放孔cpm 5824 数据处理及结果判定
NK细胞活性需进行数据转换,XSin-1p,式中PNK细胞活性,用小数表示。在进行方差分析时,需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,计算F,F< F005,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F005,P005,用多个实验组与一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩与检验进行统计。
受试样品组的NK细胞活性显著高于对照组的NK细胞活性,可判定该项实验结果阳性。

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59 增强免疫力功能结果判定: 591 经正常动物实验,受试样品具有增强免疫力作用。
在细胞免疫功能、体液免疫功能、单核-巨噬细胞功能及NK细胞活性四个方面测定中,任两个方面试验结果为阳性,可以判定该受试样品具有增强免疫力作用。
其中细胞免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,判定细胞免疫功能试验结果阳性。体液免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,判定体液免疫功能试验结果阳性。单核—巨噬细胞功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,判定单核—巨噬细胞功能试验结果阳性。NK细胞活性测定实验的一个以上剂量结果阳性,判定NK细胞活性结果阳性。
正常动物实验需进行四个方面的测定。
592 经免疫功能低下动物实验,受试样品对免疫功能低下者具有增强免疫力作用。
在免疫功能低下模型成立条件下,血液白细胞总数、细胞免疫功能、体液免疫功能、单核-巨噬细胞功能及NK细胞活性五个方面测定中,任两个方面试验结果为阳性,判定该受试样品对免疫功能低下者具有增强免疫力作用。
其中细胞免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,或任一个实验的两个剂量组结果阳性,可判定细胞免疫功能试验结果阳性。体液免疫功能测定项目中两个实验的结果均为阳性,或任一个实验的两个剂量组结果阳性,可判定体液免疫功能试验结果阳性。单核—巨噬细胞功能测定项目中两个实验的结果均为阳,或任一个实验的两个剂量组结果阳性,可判定单核—巨噬细胞功能试验结果阳性。NK细胞活性测定实验的一个以上剂量结果阳性,可以判定NK细胞活性结果阳性。血液白细胞总数测定的二个剂量结果阳性,可以判定血液白细胞总数结果阳性。
免疫功能低下模型动物实验需进行任三个方面项目的测定。同时在各项实验,所测项目都不出现加重免疫抑制剂作用的结果(表现为一个以上剂量组低于模型对照组,P005
增强免疫力功能评价方法及修订说明
增强免疫力功能评价方法修订说明
一、承担单位
广东省疾病预防控制中心为主要承担单位,本次任务来源于国家食品药品监督管理局保健食品化妆品监管司的委托,《保健食品检验与评价技术规范(2003年版》中“增强免疫力功能评价程序与检验方法”进行修订。 二、主要工作过程
国家食品药品监督管理局保健食品化妆品监管司于20094月召开了“保健食品功能评方法及有关程序修订”课题协作组工作会议,参会的有中国疾病预防控制中心营养与食品安全所、广东省疾病预防控制中心、上海市疾病预防与控制中心、北京市疾病预防控制中心、四川大学华西公共卫生学院、中国中医研究院东直门医院与国家食品药品监督管理局保健食品审评中心的专家近15,上对“保健食品功能评价方法及有关程序修订”修订的原则与框架作了充分的讨,又分别征求了相关专家对修订内容的意见。为了做好本次检验方法的修订工,广东省疾病预防控制中心成立了“增强免疫力功能评价程序与检验方法”修订的起草工作小组,经查阅国内外相关资料,参考国家食品药品监督管理局保健食品化妆品监管司召开的工作会议的精神,咨询有关专家与实验室同行的意见与建议,形成了本次任务的工作方案,总体上要提高检验方法的科学性、准确性与客观性,提高保健食品功能的技术标准。本次修订主要工作:建立与完善免疫低下模型方法,增加总体免疫功能评价方法指标,增加应用Brdu掺入标记法检测LPSConA诱导的小鼠淋巴细胞转化功能方法,增加单核-巨噬细胞吞噬荧光微球试验方法,改良发型变态反应(DTH测量方法,形成“增强免疫力功能”评价检验方法修改,在此基础上提出相应的判定标准。经过起草工作小组开展的大量条件探索与实验方法研究,对各种实验结果进行了比较与取舍,形成了修订初稿后,起草工作小组召开了多次专家研讨会,征求专家意见,对初稿进行了反复修改,形成征求意见稿。方法验证工作由广东省疾病预防控制中心、湖南省疾病预防控制中心、湖北省疾病预防控制中心、福建省疾病预防控制中心分别进行验证试验。在此基础上,征集、整理与归纳了相关意见与建议。
国家食品药品监督管理局保健食品化妆品监管司于20108月再次召开了“保健食品功能评价方法及有关程序修订”课题协作组工作会议,参会的有中国
增强免疫力功能评价方法及修订说明
疾病预防控制中心营养与食品安全所、广东省疾病预防控制中心、上海市疾病预防与控制中心、北京市疾病预防控制中心、四川大学华西公共卫生学院、中国中医研究院西苑医院的专家近10,会上针对验证过程中存在的技术问题及可操作性作了充分讨论并提出修改意见,起草工作小组根据会议精神对修订方案做了进一步完善,并邀请北京市疾病预防控制中心进行部分项目的验证,综合了方法验证单位的意见后形成了征求意见稿。
2011722日国家食品药品监督管理局保健食品化妆品监管司在北京宣武门商务酒店召开了“保健食品功能评价方法及有关程序修订”定稿专家研讨会,参会的有中国疾病预防控制中心营养与食品安全所、北京大学、广东省疾病预防控制中心、北京市疾病预防控制中心、上海市疾病预防控制中心、中国中药研究院、中国中医研究院西苑医院、北京医院、国家食品药品监督管理局保健食品审评中心的专家14,会上对修订后的“增强免疫力功能评价程序与检验方法”科学性、客观性与可操作性给予肯定,并提出修改意见,对征求意见稿做了进一步完善。 三、编制原则
1总原则,提高保健食品“增强免疫力功能评价程序与检验方法”的科学性、准确性与规范性,适应当前法规对加强保健食品监管的要求。
2修订内容要符合当前增强免疫力功能评价的基础理论,既考虑原规范合理的方法,又要提高保健食品功能检验的技术标准,选择保留、改良或新增加的指标要在国内外已经广泛应用并得到普遍的认可,可以反映保健食品增强免疫力的功能作用。
3、在撰写过程中,注意科学性、合理性、与适用性。 四、确定相关技术内容及新旧方法的对比

1 原方法 序号
内容
现方法 序号
1 内容 原理
增加“原理”条款,概括了实验原
2
1 实验动物
2 实验动物选择
更改标题及序号,详细描述原方法内容
3
2 剂量分组及受试样品给予时
3 剂量分组及受试样品给予时间
更改标题序号,增加免疫低下模型法分组内容 修订理由

增强免疫力功能评价方法及修订说明

4


4 免疫功能低下动物模型
增加建立免疫功能低下动物模型的详细方法 5 6

51 52132 522 8

523 溴脱氧尿嘧啶核苷标记酶(BrdU-ELISA
9 3114 10 32材料 22 11 32DTH的产生与23测定 2 12 32数据处理与结24 13 33 果判定 抗体生成细胞(Jerne改良玻片法
14 33仪器与材料 2 15 33SRBC 31 16

542 5431 5432 17

5433 18 33玻片涂膜 33 19 33免疫动物 34 20 33脾细胞悬液制35 21


5434 5435 54361
22


54顶层培养基制备
增加了顶层培养基制备方法
底层培养基制备 脾细胞悬液制备 免疫动物
将羊血洗涤步骤调入到“5431 SRBC”中
更改标题序号,对原方法内容进行了简化
增加了底层培养基制备方法


取消
补体制备
增加了补体制备具体操作方法
完全培养基的制备
增加了完全培养基的制备方法
SRBC
仪器与材料
更改标题序号,增加溶血空斑自动图象分析仪及SA缓冲液具体配方 增加了羊血洗涤的操作方法
5322 53232 5324 54 抗体生成细胞检测(改良
更改标题及序号,对原方法进行改
数据处理与结果判定
更改标题序号,引入肿胀度指标
DTH的产生与测定 材料
更改标题序号,增加足趾容积测量仪为测量仪器
更改标题序号,引入肿胀度作为仪器测量的指标
同位素渗入法


增加“溴脱氧尿嘧啶核苷标记酶联免疫吸附测定法(BrdU-ELISA内容 取消方法
XTT
增加XTT法内容
外周血白细胞测定 脾细胞悬液制备

增加“外周血白细胞测定”内容 更改标题序号,对原方法内容进行了简化
31脾细胞悬液制13
2

7

增强免疫力功能评价方法及修订说明
362 23

54363
24


54364
25 34仪器与材料 22 5522
26 34溶血反应 234 55234
27


552341
28


552342
29


5524
30 35仪器与试剂
2 562
31 35测定 33 32 36 小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验
33


57
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬荧光微球试验方法
取消“小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验”,增加“小鼠腹腔巨噬细胞吞噬荧光微球试验方法”作为替代, 34 37仪器与材料 12 5812
35 37脾细胞悬液的58脾细胞悬液的制备(效应细更改标题序号,对原方法内容进行仪器与材料
增加全自动细胞计数仪
5633

取消
测定
增加全自动酶标仪作为测定仪器
仪器与试剂
增加全自动酶标仪
数据处理及结果判定
增加全自动酶标仪测定结果的半数溶血值计算公式
检测方法2(全自动酶标仪测定
增加全自动酶标仪测定的具体操作方法
检测方法1(分光光度计测
增加标题
溶血反应测定
更改标题及序号,将原方法细分为分光光度计及全自动酶标仪测定两种方法
仪器与材料
增加分光光度计、全自动酶标仪等仪器与材料
空斑测定
改用溶血空斑自动图象分析仪计数空斑
铺板
用六孔板代替玻片作为载体,增加了铺板的具体操作方法

增强免疫力功能评价方法及修订说明
13制备(效应细3
133
36
4
增强免疫力功59 增强免疫功能结果判定
修改标题序号

了简化,引入全自动细胞计数仪作为细胞计数方法之一
能的结果判定

37


591
38


592
经免疫功能低下动物实验,受试样品对免疫功能低下者具有增强免疫力作用
1、增加“免疫功能低下动物实验的结果判定”内容, 2、规定项目测定的要求。
经正常动物实验,受试样品具有增强免疫力作用
修改“试验结果阳性”的判定内容


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